Везде

ОБНПрикладная биохимия и микробиология Applied Biochemistry and Microbiology

  • ISSN (Print) 0555-1099
  • ISSN (Online) 3034-574X

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ БАКТЕРИАЛЬНЫХ КЛЕТОК К БАКТЕРИОФАГУ С ПОМОЩЬЮ КОМПАКТНОГО АКУСТИЧЕСКОГО АНАЛИЗАТОРА

Вы можете
Код статьи
S3034574XS0555109925020103-1
DOI
10.7868/S3034574X25020103
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Гулий О. И.
  • Аффилиация: Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов - обособленное структурное подразделение Федерального исследовательского центра “Саратовский научный центр Российской академии наук”
Зайцев Б. Д.
  • Аффилиация: Саратовский филиал Института радиотехники и электроники им. В.А. Котельникова РАН
Караваева О. А.
  • Аффилиация: Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов - обособленное структурное подразделение Федерального исследовательского центра “Саратовский научный центр Российской академии наук”
Бородина И. А.
  • Аффилиация: Саратовский филиал Института радиотехники и электроники им. В.А. Котельникова РАН
Том/ Выпуск
Том 61 / Номер выпуска 2
Страницы
207-216
Аннотация
В работе впервые продемонстрированы возможности компактной акустической сенсорной системы для оценки воздействия бактериофагов на микробные клетки и оценки их чувствительности к бактериофагам. Установлено, что с помощью разработанной системы можно оценить активность бактериофагов в отношении микробных клеток в течение 5 мин без учета времени культивирования микробных клеток для проведения анализа. Полученные результаты являются перспективными для дальнейшего развития акустической сенсорной системы при фаготерапии.
Ключевые слова
бактериофаг микробная клетка фаготерапия акустический компактный анализатор
Дата публикации
05.07.2024
Год выхода
2024
Всего подписок
0
Всего просмотров
26

Библиография

  1. 1. Sulakvelidze A., Alavidze Z., Morris J.G. Jr. // Antimicrob. Agents Chemother. 2001. V. 45. № 3. P. 649-659. https://doi.org/10.1128/AAC.45.3.649-659.2001
  2. 2. Kifelew L.G., Warner M.S., Morales S., Vaughan L., Woodman R., Fitridge R. et al. // BMC Microbiol. 2020. V. 20. № 1. P. 204. https://doi.org/10.1186/s12866-020-01891-8
  3. 3. Macdonald K.E., Stacey H.J., Harkin G., Hall L.M.L, Young M.J., Jones J.D. // PLoS ONE. 2020. V. 15. e0243947. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0243947
  4. 4. Chanishvili N. // Adv. Virus Res. 2012. V. 83. P. 3-40. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-394438-2.00001-3
  5. 5. Horcajada J.P., Montero M., Oliver A., Sorlí L., Luque S., Gómez-Zorrilla S. et al. // Clin. Microbiol. Rev. 2019. V. 32. № 4. e00031-19. https://doi.org/10.1128/CMR.00031-19
  6. 6. Mandal S.M., Roy A., Ghosh A.K., Hazra T.K., Basak A., Franco O.L. // Front. Pharmacol. 2014. V. 5. P. 105. https://doi.org/10.3389/fphar.2014.00105
  7. 7. Pirnay J.P., Ferry T., Resch G. // FEMS Microbiol. Rev. 2022. V. 46. № 1. https://doi.org/10.1093/femsre/fuab040
  8. 8. Botka T., Pantůček R., Mašlaňová I., Benešík M., Petráš P., Růžičková V. et al. // Sci. Rep. 2019. V. 9. P. 5475. https://doi.org/10.1038/s41598-019-41868-w
  9. 9. Taati Moghadam M., Amirmozafari N., Shariati A., Hallajzadeh M., Mirkalantari S., Khoshbayan A., Masjedian Jazi F. // Infect. Drug. Resist. 2020. V. 13. P. 45-61. https://doi.org/10.2147/IDR.S234353
  10. 10. Taati Moghadam M., Khoshbayan A., Chegini Z., Farahani I., Shariati A. // Drug. Des. Devel. Ther. 2020. V. 14. P. 1867-1883. https://doi.org/10.2147/DDDT.S251171
  11. 11. Huon J.F., Montassier E., Leroy A.G., Grégoire M., Vibet M.A., Caillon J. et al. // mSystems. 2020. V. 5. № 6. e00542-20. https://doi.org/10.1128/mSystems.00542-20
  12. 12. Shivaram K.B., Bhatt P., Verma M.S., Clase K., Simsek H. // Science of the Total Environment. 2023. V. 901. P. 165859. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2023.165859
  13. 13. Wang Z., Zhao X. // J. Appl. Microbiol. 2022. V. 133. № 4. P. 2137-2147. https://doi.org/10.1111/jam.15555
  14. 14. Tang A.-Q., Yuan L., Chen C.-W., Zhang Y.-S., Yang Z.-Q. // Lwt. 2023. V. 182. P. 114774. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2023.114774
  15. 15. Carmody C.M., Goddard J.M., Nugen S.R. // Bioconjugate Chemistry. 2021. V. 32. № 3. P. 466-481. https://doi.org/10.9931021/acs.bioconjchem.1c00018
  16. 16. Li T., Lu X.M., Zhang M.R., Hu K., Li Z. // Bioactive Materials. 2022. V. 11. P. 268-282. https://doi.org/10.1016/j.1130bioactmat.2021.09.029
  17. 17. Stone E., Campbell K., Grant I., McAulie O. // Viruses. 2019. V. 11. P. 567. https://doi.org/10.3390/v11060567
  18. 18. Alaoui Mdarhri H., Benmessaoud R., Yacoubi H., Seffar L., Guennouni Assimi H., Hamam M. et al. // Antibiotics (Basel). 2022. V. 11. № 12. P. 1826. https://doi.org/10.3390/antibiotics11121826
  19. 19. Soothill J.S. // Burns. 1994. V. 20. № 3. P. 209-211. https://doi.org/10.1016/0305-4179 (94)90184-8
  20. 20. Mendes J.J., Leandro C., Corte-Real S., Barbosa R., Cavaco-Silva P, Melo-Cristino J. et al. // Wound Repair Regen. 2013. V. 21. P. 595-603. https://doi.org/10.1111/wrr.12056
  21. 21. dos Santos Ferreira N., Hayashi Sant’ Anna F., Massena Reis V., Ambrosini A., Gazolla Volpiano C., Rothballer M. et al. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2020. V. 70. № 12. P. 6203-6212.22. https://doi.org/10.1099/ijsem.0.004517
  22. 22. Guliy O.I., Zaitsev B.D., Borodina I.A., Shikhabudinov A.P., Teplykh A.A. // Appl. Biochem. Microbiol. 2017. V. 53. № 4. P. 464-469. https://doi.org/10.1134/S0003683817040068
  23. 23. Sambrook J., Fritsch E.F., Maniatis T. Molecular Сloning: a Laboratory Manual. 2 Ed. N.Y.: Cold Spring. Maven Lab. Press, 1989. 1626 p.
  24. 24. Hoogenboom H.R., Griffits A.D., Johnson K.S., Chiswell D.J., Hundson P., Winter G. // Nucleic Acids Res. 1991. V. 19. P. 4133-4137. https://doi.org/10.1093/nar/19.15.4133.
  25. 25. Click E.M., Webster R.E. // J. Bacteriol. 1997. V. 179. №. 20. P. 6464-6471. https://doi.org/10.1128/jb.179.20.6464-6471.1997
  26. 26. Click E.M., Webster R.E. // J. Bacteriol. 1998. V. 180. №. 7. P. 1723-1728. https://doi.org/10.1128/JB.180.7.1723-1728.1998
  27. 27. Riechmann L., Holliger P. // Cell. 1997. V. 90. № 2. P. 351-360. https://doi.org/10.1016/s0092-8674 (00)80342-6.
  28. 28. Deng L.W., Malik P., Perham R.N. // Virology. 1999. V. 253. P. 271-277. https://doi.org/10.1006/viro.1998.9509
  29. 29. Branston S.D., Stanley E.C., Ward J.M., Keshavarz-Moore E. // Biotechnol. Bioproc. Eng. 2013. V. 18. P. 560-566. https://doi.org/10.1007/s12257-012-0776-9
  30. 30. Moghimian P., Srot V., Pichon B.P., Facey S.J., van Aken P.A. // JBNB. 2016. V. 7. № 2. P. 72-77. https://doi.org/10.4236/jbnb.2016.72009
  31. 31. Salivar W.O., Tzagoloff H., Pratt D. // Virology. 1964. V. 24. P. 359-371. https://doi.org/10.1016/0042-6822 (64)90173-4
  32. 32. Seo H., Cho S., Vo T.T.B., Lee A., Cho S., Kang S. et al. // Microbiol Spectr. 2023. V. 11. e01446-23. https://doi.org/10.1128/spectrum.01446-23
  33. 33. Smith G.P., Scott J.K. // Methods Enzymol. 1993. V. 217. P. 228-257. https://doi.org/10.1016/0076-6879 (93)17065-d
  34. 34. Zaitsev B.D., Borodina I.A., Teplykh A.A. // Ultrasonics. 2022. V. 126. P. 106814. https://doi.org/10.1016/j.ultras.2022.106814
  35. 35. Rakhuba, D.V., Kolomiets, E.I., Dey, E.S., Novik G.I. // Pol J Microbiol. 2010. V. 59. № 3. P. 145-155.
  36. 36. Fraser J.S., Maxwell K.L., Davidson A.R. // J. Mol. Biol. 2006. V. 359. P. 496-507. https://doi.org/10.1016/j.jmb.2006.03.043
  37. 37. Fraser J.S., Maxwell K.L., Davidson A.R. // Curr. Opin. Microbiol. 2007. V. 10. P. 382-387. https://doi.org/10.1016/j.mib.2007.05.018
  38. 38. Lukose J., Barik A.K., Mithun N., Sanoop Pavithran M., George S.D., Murukeshan V.M., Chidangil S. // Biophys Rev. 2023. V. 15. № 2. P. 199-221. https://doi.org/10.1007/s12551-023-01059-4
  39. 39. Defilippis V.R., Villarreal L.P. // Introduction to the Evolutionary Ecology of Viruses. Viral Ecology. 2000. Р. 125-208. https://doi.org/10.1016/B978-012362675-2/50005-7
  40. 40. Strathdee S.A., Hatfull G.F., Mutalik V.K., Schooley R.T. // Cell. 2023. V. 186. № 1. P. 17-31. https://doi.org/10.1016/j.cell.2022.11.017
  41. 41. Grabowski Ł., Łepek K., Stasiłojć M., Kosznik-Kwaśnicka K., Zdrojewska K., Maciąg-Dorszyńska M. et al. // Microbiol Res. 2021. V. 248. P. 126746. https://doi.org/10.1016/j.micres.2021.126741.
  42. 42. Suh G.A., Patel R. // Clin. Microbiol. Infect. 2023. V. 29. № 6. P. 710-713. https://doi.org/10.1016/j.cmi.2023.02.006.
  43. 43. Daubie V., Chalhoub H., Blasdel B., Dahma H., Merabishvili M., Glonti T. et al. // Front. Cell. Infect. Microbiol. 2022. V. 12. Р. 1000721. https://doi.org/10.3389/fcimb.2022.1000721
  44. 44. Patpatia S., Schaedig E., Dirks A., Paasonen L., Skurnik M., Kiljunen S. // Front. Cell. Infect. Microbiol. 2022. V. 12. Р. 1032052. https://doi.org/10.3389/fcimb.2022.1032052
  45. 45. Perlemoine P., Marcoux P.R., Picard E., Hadji E., Zelsmann M., Mugnier G. et al. // PLoS ONE 2021. V. 16. № 3. e0248917. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0248917
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека