- Код статьи
- S3034574XS0555109925030074-1
- DOI
- 10.7868/S3034574X25030074
- Тип публикации
- Статья
- Статус публикации
- Опубликовано
- Авторы
- Том/ Выпуск
- Том 61 / Номер выпуска 3
- Страницы
- 294-302
- Аннотация
- Многочисленные публикации свидетельствуют о повышении уровня экспрессии белков теплового шока (БТШ) при онкологических заболеваниях, поэтому перспективным является развитие методов индикации БТШ, как маркера онкологических заболеваний. В настоящей работе получены фаговые антитела, специфичные к БТШ клеточной линии мышиной миеломы. Впервые с помощью компактного акустического датчика исследовано влияние проводимости среды измерения на регистрацию аналитического сигнала при взаимодействии фаговых антител с БТШ. Экспериментально установлена возможность регистрации специфичного взаимодействия "БТШ-фаговые антитела" в суспензиях с проводимостью 50–1180 мкСм/см. Проведены контрольные эксперименты по оценке воздействия массивной нагрузки на датчик. Полученные результаты будут способствовать развитию акустических сенсорных систем для диагностики БТШ.
- Ключевые слова
- белки теплового шока акустическая сенсорная система фаговые антитела
- Дата публикации
- 10.01.2025
- Год выхода
- 2025
- Всего подписок
- 0
- Всего просмотров
- 28
Библиография
- 1. Poghossian A., Schoning M.J. // Electroanalysis 2014. V. 26. P. 1197–1213. https://doi.org/10.1002/elan.201400073
- 2. Marvi F., Jafari K. // IEEE Trans. Instrum. Meas. 2021. V. 70. P. 7501. https://doi.org/10.1109/TIM.2021.3052001
- 3. Durmuya N.G., Lin R.L., Kozberge M., Dermici D., Khademhosseini A., Demirci U. // Encyclopedia of Microfluidics and Nanofluidics. Living Reference Work. / Ed. D. Li. New York: Springer Science+Business Media, 2014. https://doi.org/10.1007/978-3-642-27758-0_10-2
- 4. Lange K., Rapp B.E., Rapp M. // Anal. Bioanal. Chem. 2008. V. 391. P. 1509–1519. https://doi.org/10.1007/s00216-008-1911-5
- 5. Guliy O.I., Zaitsev B.D., Borodina I.A. // Nanobioanalytical Approaches to Medical Diagnostics. / Eds P.K. Maurya, P. Chandra. Elsevier Ltd. Woodhead Publishing, 2022. Chapter 5. pp. 143–177. https://doi.org/10.1016/B978-0-323-85147-3.00004-9
- 6. Guliy O.I., Zaitsev B.D., Borodina I.A. // Sensors. 2023. V. 23. P. 6292. https://doi.org/10.3390/s23146292
- 7. Rocha-Gaso M.I., March-Iborra C., Montoya-Baides A., Arnau-Yives A. // Sensors. 2009. V. 9. P. 5740–5769. https://doi.org/10.3390/s90705740
- 8. Lee J., Choi Y.-S., Lee Y., Lee H.J., Lee J.N., Kim S.K. et al. // Anal. Chem. 2011. V. 83. P. 8629–8635. https://doi.org/10.1021/ac2020849
- 9. Han S.B., Lee S.S. // Micromachines 2024. V. 15. P. 249. https://doi.org/10.3390/mi15020249
- 10. Zhang J., Zhang X., Wei X., Xue Y., Wan H., Wang P. // Anal. Chim. Acta. 2021. V. 1164. P. 338321. https://doi.org/10.1016/j.aca.2021.338321
- 11. Mascini M., Del Carlo M., Compagnone D., Cozzani I., Tiscar P.G., Mpamhanga C.P. et al. // Anal. Lett. 2006. V. 39. № 8. P. 1627–1642. https://doi.org/10.1080/00032710600713529
- 12. Luengwilai K., Beckles D.M., Saliveit M.E. // Postharvest Biol. Technol. 2012. V. 63. № 1. P. 123–128. https://doi.org/10.1016/j.postharvbio.2011.06.017
- 13. Polenta G.A., Guidi S.M., Ambrosi V., Denoya G.I. // Curr. Res. Food Sci. 2020. V. 3. P. 329–338. https://doi.org/10.1016/j.crfs.2020.09.002
- 14. Kampinga H.H., Hageman J., Yos M.J., Kubota H., Tanguay R.M., Bruford E.A. et al. // Cell Stress Chaperones. 2009. V. 14. № 1. P. 105–111. https://doi.org/10.1007/s12192-008-0068-7
- 15. Maksimovich N.Y., Bon L.I. // J. Biomed. 2020. V. 16. № 2. P. 60–67. https://doi.org/10.33647/2074-5982-16-2-60-67
- 16. Shevtsov M., Balogi Z., Khachatryan W., Gao H., Vigh L., Mulino G. // Cells. 2020. V. 9. P. 1263. https://doi.org/10.3390/cells9051263
- 17. Rokutan K. // J. Gastroenterol. Hepatol. 2000. 15(Suppl):D. P. 12–19. https://doi.org/10.1046/j.1440-1746.2000.02144.x
- 18. Waters E.R. // J. Exp. Bot. 2013. V. 64. № 2. P. 391–403. https://doi.org/10.1093/jxb/ers355
- 19. Gully O.I., Staroverov S.A., and Dykman L.A. // Appl. Biochem. Microbiol. 2023. V. 59. № 4. P. 395–407. https://doi.org/10.1134/S0003683823040063
- 20. Bayer C., Liebhardt M.E., Schmid T.E., Trajkovic-Arsic M., Hubek, Specht H.M. et al. // Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 2014. V. 88. № 3. P. 694–700. https://doi.org/10.1016/j.jirobp.2013.11.008
- 21. Qu B., Jia Y., Liu Y., Wang H., Ren G., Wang H. // Cell Stress and Chaperones. 2015. V. 20. P. 885–892. https://doi.org/10.1007/s12192-015-0618-8
- 22. Komarova E.Y., Suegov R.V., Nikotina A.D., Aksenov N.D., Garneva L.A., Shtam T.A. et al. // Sci. Rep. 2021. V. 11. P. 21314. https://doi.org/10.1038/s41598-021-00734-4
- 23. Staroverov S.A., Kozlov S.V., Brovko F.A., Fursova K.K., Shardin V.V., Fomin A.S. et al. // Biosens. Bioelectron.: X. 2022. V. 11. P. 100211. https://doi.org/10.1016/j.biosx.2022.100211
- 24. Dykman L.A., Staroverov S.A., Vyshchikov R.D., Fursova K.K., Brovko F.A., Soldatov D.A., Gully O.I. // Appl. Biochem d Microbiol. 2023. V. 59. № 4. P. 539–545. https://doi.org/10.1134/S0003683823040051
- 25. Gully O.I., Khanadeev V.A., Dykman L.A. // Front. Biosci. (Elite Ed.) 2024. V. 16. № 3. P. 24. https://doi.org/10.31083/j.fbe1603024
- 26. Petrenko V.A. // Viruses 2024. V. 16. P. 968. https://doi.org/10.3390/v16060968
- 27. Gully O.I., Zaitsev B.D., Borodina I.A., Staroverov S.A., Vyshchikov R.D., Fursova K.K. et al. // Microchem. J. 2024. V. 207. 111661. https://doi.org/10.1016/j.microc.2024.111661
- 28. Ulitin A.B., Kapralova M.V., Laman A.G., Shepelyakovskaya A.O., Bulgakova E.V., Fursova K.K. et al. // Dokl. Biochem. Biophys. 2005. V. 405. P. 437–440. https://doi.org/10.1007/s10628-005-0134-3
- 29. Calderwood S.K., Khaleque M.A., Sawyer D.B., Cloeca D.R. // Trends Biochem. Sci. 2006. V. 31. P. 164–172. https://doi: 10.1016/j.tibs.2006.01.006
